製品の特長

StemSpan-AOFは、ヒト造血細胞の培養と増殖に最適なcGMP培地です

• ヒト臍帯血由来CD34陽性細胞を7日間の培養で20倍に増殖できます
• より未分化なCD34^brightCD90⁺CD45RA^-細胞集団を培養で維持できます
• ゲノム編集プロトコールへの使用に適しています
• 動物由来フリー、フェノールレッドフリーの組成です
• cGMPのもとで製造および試験されています
• 原料は完全にトレーサビリティされています

データ紹介

図１．StemSpan™-AOFで培養したCD34⁺細胞の免疫表現型

EasySep™ Human Cord Blood CD34 Positive Selection Kit II（ST-17896）で分離した臍帯血（CB）由来のCD34⁺細胞を、StemSpan™ CD34⁺ Expansion Supplement (10X)（ST-02691）とUM171 *を添加したStemSpan™-AOF（ST-100-0130）で7日間培養しました。 培養後に培養細胞を7-AADによる染色と、CD34、CD90、およびCD45RAに対する蛍光標識抗体で染色し、FACS解析しました。

CD34とFSCに対するFACSプロットにおいて水平方向に示した点線は、CD34発現の蛍光色素マイナス1（FMO）コントロールに基づくCD34^-細胞とCD34⁺細胞の境界を示しています。これらのFACSプロットをオレンジ色で示した領域には、CD34^bright細胞の母集団を示しています。連続ゲートを使用して、CD34⁺細胞、CD34^bright細胞、およびCD34^brightCD90⁺CD45RA^-細胞の生細胞の割合を示しました。

図２．StemSpan™ シリーズは他社の培地よりもヒトCD34⁺およびCD34^bright細胞の拡大培養を促進します

臍帯血から分離したCD34⁺細胞をStemSpan™シリーズ（SFEM、SFEM II、ACF、およびXF、オレンジ色のバー）または他社の培地（灰色のバー）で7日間培養した結果を比較しました。すべての培地にStemSpan™ CD34⁺ Expansion SupplementとUM171 *を添加しました。

図1に示すように、培養中のCD34⁺およびCD34^bright生細胞をFACS解析して（A）頻度、および（B）細胞の増殖量を比較しました。他社の培地と比較して、StemSpan™シリーズではCD34⁺およびCD34^bright細胞が有意に高い増殖を示しました。(P < 0.05, one-way ANOVA followed by Dunnett’s post hoc test)。Data shown are mean ± SEM (n = 8).

* 最終濃度が1 μMに調製されたUM729（ST-72332）を使用した場合も、同様の結果が予想されます。 UM171とUM729を比較するデータを含む詳細については、Fares et al. 2014をご参照ください。

注：上図の「StemSpan™-AOF」のデータはフェノールレッド含有の旧製品（StemSpan™-ACF：販売中止）で取得したものです。ただし、StemSpan™-AOF（ST-100-0130）のパフォーマンスも非常に似ていることが確認されています。

図3. StemSpan™シリーズは他社の培地よりもヒトCD34^brightCD90⁺CD45RA^-細胞の拡大培養を促進します

図2と同様に培養および比較検討をしました。図1に示すように、培養中のCD34⁺ CD90⁺CD45RA（実線）およびCD34^brightCD90⁺CD45RA^-（点線）生細胞の（A）頻度および（B）細胞増殖をフローサイトメトリーで分析しました。StemSpan™シリーズでは、CD34^brightCD90⁺CD45RA^-細胞は有意に高い増殖を示しました(P < 0.05, one-way ANOVA followed by Dunnett’s post hoc test)。

図4.ゲノム編集後のCD34およびCD45RA-HSPCの拡大培養において、StemSpan™シリーズは他社の培地よりも多くの細胞を増やせます

図2と同様に培養および比較検討をしました。分離したCB由来CD34⁺細胞をStemSpan™シリーズの培地（オレンジ色）、または他社のXeno Free培地（灰色のバー）で2日間培養しました。すべての培地にStemSpan™ CD34⁺ Expansion SupplementとUM171を添加して培養しました。 次に、ベータ-2-ミクログロブリン（B2M）を標的とするcrRNA：tracrRNAを含むArcitect™ CRISPR-Cas9 RNP複合体を使用して細胞をエレクトロポレーションし、同じ条件でさらに4日間培養しました。MHC-Iの染色とフローサイトメトリーによる分析によって測定されたノックアウト効率はすべての培地で類似しており、約70〜80％でした。（A）CD34⁺細胞の比率と、（B）CD34⁺CD90⁺CD45RA^-細胞はエレクトロポレーションをしてから4日後の細胞数をフローサイトメトリーで定量化しました。表示のデータは平均+SDです（n = 4ドナー; ** P <0.01）。